这是一篇来自已证抗体库的有关大鼠 Cd8b的综述，是根据21篇发表使用所有方法的文章归纳的。这综述旨在帮助来邦网的访客找到最适合Cd8b 抗体。
Cd8b 同义词: Cd8b1

赛默飞世尔
小鼠 单克隆（OX8）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 1:500
赛默飞世尔 Cd8b抗体（eBioscience, OX8)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上浓度为1:500. Stem Cell Res Ther (2021) ncbi
小鼠 单克隆（OX8）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 图 5a
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Termo Fisher Scientifc, OX-8)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上 (图 5a). Biomed Res Int (2019) ncbi
小鼠 单克隆（eBio341 (341)）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 图 s1j
赛默飞世尔 Cd8b抗体（eBioscience, eBio341)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上 (图 s1j). Nature (2019) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 图 s1a
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Caltag, OX-8)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上 (图 s1a). PLoS ONE (2016) ncbi
小鼠 单克隆（OX8）
  • 流式细胞仪; 小鼠
赛默飞世尔 Cd8b抗体（eBioscience, OX8)被用于被用于流式细胞仪在小鼠样本上. J Immunol (2015) ncbi
小鼠 单克隆（eBio341 (341)）
  • 流式细胞仪; 小鼠; 图 1b
赛默飞世尔 Cd8b抗体（eBioscience, eBio341)被用于被用于流式细胞仪在小鼠样本上 (图 1b). Nat Immunol (2014) ncbi
小鼠 单克隆（OX8）
  • 免疫组化-石蜡切片; 大鼠; 图 1
赛默飞世尔 Cd8b抗体（eBioscience, OX8)被用于被用于免疫组化-石蜡切片在大鼠样本上 (图 1). Methods Mol Biol (2014) ncbi
小鼠 单克隆（OX8）
  • 流式细胞仪; 人类; 图 1
赛默飞世尔 Cd8b抗体（eBiosciences, LT8)被用于被用于流式细胞仪在人类样本上 (图 1). J Immunol (2010) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 流式细胞仪; 大鼠
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Invitrogen, OX-8)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上. Inflamm Bowel Dis (2008) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 表 1
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Caltag, OX-8)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上 (表 1). Inflamm Bowel Dis (2007) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 表 1
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Caltag, OX-8)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上 (表 1). Clin Exp Immunol (2006) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 流式细胞仪; 大鼠
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Caltag, OX-8)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上. Immunology (2005) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 图 5
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Caltag, OX-8)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上 (图 5). Clin Exp Immunol (2004) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 免疫组化; 大鼠; 1:25; 图 4
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Caltag, OX-8)被用于被用于免疫组化在大鼠样本上浓度为1:25 (图 4). Muscle Nerve (2002) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 免疫组化; 大鼠; 1:100
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Biosource, MRC OX-8)被用于被用于免疫组化在大鼠样本上浓度为1:100. Cancer Res (1999) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 免疫组化; 大鼠; 1:200; 图 6
赛默飞世尔 Cd8b抗体（Biosource, MRC OX-8)被用于被用于免疫组化在大鼠样本上浓度为1:200 (图 6). Hum Gene Ther (1997) ncbi
小鼠 单克隆（OX-8）
  • 免疫沉淀; 大鼠; 500 ug/ml; 图 2
赛默飞世尔 Cd8b抗体（noco, MRC OX-8)被用于被用于免疫沉淀在大鼠样本上浓度为500 ug/ml (图 2). Eur J Immunol (1983) ncbi
圣克鲁斯生物技术
小鼠 单克隆（32-M4）
  • 免疫组化; 人类; 图 1a
圣克鲁斯生物技术 Cd8b抗体（Santa Cruz, SC-1177)被用于被用于免疫组化在人类样本上 (图 1a). J Immunother Cancer (2022) ncbi
小鼠 单克隆（32-M4）
  • 免疫组化; 小鼠; 1:50; 图 9d
圣克鲁斯生物技术 Cd8b抗体（Santa Cruz, sc-1177)被用于被用于免疫组化在小鼠样本上浓度为1:50 (图 9d). J Neuroinflammation (2020) ncbi
伯乐（Bio-Rad）公司
小鼠 单克隆（341）
  • 免疫组化; 大鼠; 1:100; 图 4a
伯乐（Bio-Rad）公司 Cd8b抗体（Bio-Rad, MCA938)被用于被用于免疫组化在大鼠样本上浓度为1:100 (图 4a). BMC Med (2020) ncbi
小鼠 单克隆（341）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 图 s1d
伯乐（Bio-Rad）公司 Cd8b抗体（Serotec, 3.41)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上 (图 s1d). PLoS ONE (2016) ncbi
美天旎
人类 单克隆（REA222）
  • 流式细胞仪; 大鼠; 1:100; 图 6f
美天旎 Cd8b抗体（Miltenyi Biotec, 130-103-322)被用于被用于流式细胞仪在大鼠样本上浓度为1:100 (图 6f). PLoS ONE (2017) ncbi
文章列表
  1. Ni H, Zhang H, Li L, Huang H, Guo H, Zhang L, et al. T cell-intrinsic STING signaling promotes regulatory T cell induction and immunosuppression by upregulating FOXP3 transcription in cervical cancer. J Immunother Cancer. 2022;10: pubmed 出版商
  2. Aussel C, Baudry N, Grosbot M, Caron C, Vicaut E, Banzet S, et al. IL-1β primed mesenchymal stromal cells moderate hemorrhagic shock-induced organ injuries. Stem Cell Res Ther. 2021;12:438 pubmed 出版商
  3. Zahedi K, Brooks M, Barone S, Rahmati N, Murray Stewart T, Dunworth M, et al. Ablation of polyamine catabolic enzymes provokes Purkinje cell damage, neuroinflammation, and severe ataxia. J Neuroinflammation. 2020;17:301 pubmed 出版商
  4. Jörns A, Ishikawa D, Teraoku H, Yoshimoto T, Wedekind D, Lenzen S. Remission of autoimmune diabetes by anti-TCR combination therapies with anti-IL-17A or/and anti-IL-6 in the IDDM rat model of type 1 diabetes. BMC Med. 2020;18:33 pubmed 出版商
  5. Jirsova Z, Heczkova M, Dankova H, Malinska H, Videnska P, Vespalcova H, et al. The Effect of Butyrate-Supplemented Parenteral Nutrition on Intestinal Defence Mechanisms and the Parenteral Nutrition-Induced Shift in the Gut Microbiota in the Rat Model. Biomed Res Int. 2019;2019:7084734 pubmed 出版商
  6. Lodygin D, Hermann M, Schweingruber N, Flügel Koch C, Watanabe T, Schlosser C, et al. β-Synuclein-reactive T cells induce autoimmune CNS grey matter degeneration. Nature. 2019;566:503-508 pubmed 出版商
  7. Lang S, Li L, Wang X, Sun J, Xue X, Xiao Y, et al. CXCL10/IP-10 Neutralization Can Ameliorate Lipopolysaccharide-Induced Acute Respiratory Distress Syndrome in Rats. PLoS ONE. 2017;12:e0169100 pubmed 出版商
  8. Rigo Adrover M, Franch A, Castell M, Pérez Cano F. Preclinical Immunomodulation by the Probiotic Bifidobacterium breve M-16V in Early Life. PLoS ONE. 2016;11:e0166082 pubmed 出版商
  9. Pohar J, Lainšček D, Fukui R, Yamamoto C, Miyake K, Jerala R, et al. Species-Specific Minimal Sequence Motif for Oligodeoxyribonucleotides Activating Mouse TLR9. J Immunol. 2015;195:4396-405 pubmed 出版商
  10. Backer R, Helbig C, Gentek R, Kent A, Laidlaw B, Dominguez C, et al. A central role for Notch in effector CD8(+) T cell differentiation. Nat Immunol. 2014;15:1143-51 pubmed 出版商
  11. Wang Y, Alexander S. DNA vaccination as a treatment for chronic kidney disease. Methods Mol Biol. 2014;1143:297-303 pubmed 出版商
  12. Horowitz A, Behrens R, Okell L, Fooks A, Riley E. NK cells as effectors of acquired immune responses: effector CD4+ T cell-dependent activation of NK cells following vaccination. J Immunol. 2010;185:2808-18 pubmed 出版商
  13. Qian B, Tonkonogy S, Sartor R. Aberrant innate immune responses in TLR-ligand activated HLA-B27 transgenic rat cells. Inflamm Bowel Dis. 2008;14:1358-65 pubmed 出版商
  14. Hoentjen F, Tonkonogy S, Qian B, Liu B, Dieleman L, Sartor R. CD4(+) T lymphocytes mediate colitis in HLA-B27 transgenic rats monoassociated with nonpathogenic Bacteroides vulgatus. Inflamm Bowel Dis. 2007;13:317-24 pubmed
  15. Hoentjen F, Tonkonogy S, Liu B, Sartor R, Taurog J, Dieleman L. Adoptive transfer of nontransgenic mesenteric lymph node cells induces colitis in athymic HLA-B27 transgenic nude rats. Clin Exp Immunol. 2006;143:474-83 pubmed
  16. Qian B, Tonkonogy S, Hoentjen F, Dieleman L, Sartor R. Dysregulated luminal bacterial antigen-specific T-cell responses and antigen-presenting cell function in HLA-B27 transgenic rats with chronic colitis. Immunology. 2005;116:112-21 pubmed
  17. Dieleman L, Hoentjen F, Qian B, Sprengers D, Tjwa E, Torres M, et al. Reduced ratio of protective versus proinflammatory cytokine responses to commensal bacteria in HLA-B27 transgenic rats. Clin Exp Immunol. 2004;136:30-9 pubmed
  18. Ito T, Kumamoto T, Horinouchi H, Yukishige K, Sugihara R, Fujimoto S, et al. Adhesion molecule expression in experimental myositis. Muscle Nerve. 2002;25:409-18 pubmed
  19. Benedetti S, Bruzzone M, Pollo B, DiMeco F, Magrassi L, Pirola B, et al. Eradication of rat malignant gliomas by retroviral-mediated, in vivo delivery of the interleukin 4 gene. Cancer Res. 1999;59:645-52 pubmed
  20. Benedetti S, DiMeco F, Pollo B, Cirenei N, Colombo B, Bruzzone M, et al. Limited efficacy of the HSV-TK/GCV system for gene therapy of malignant gliomas and perspectives for the combined transduction of the interleukin-4 gene. Hum Gene Ther. 1997;8:1345-53 pubmed
  21. Thomas M, Green J. Molecular nature of the W3/25 and MRC OX-8 marker antigens for rat T lymphocytes: comparisons with mouse and human antigens. Eur J Immunol. 1983;13:855-8 pubmed